ПРОБЛЕМНЫЕ СТАТЬИ

УДК 616. 36-002-02:615. 2

ПОРАЖЕНИЯ ПЕЧЕНИ КСЕНОБИОТИКАМИ

А. А. Пентюк, д. м. н. , проф. , Л. В.  Мороз к. м. н. , О. В.  Паламарчук

Винницкий государственный медицинский университет им.  М. И.  Пирогова

Ежегодно более 1 млн человек страдает от побочных эффектов фармакотерапии и около 180 тыс вследствие этого умирают, экономический ущерб составляет более 136 млрд долларов в год [1].

Многие ксенобиотики способны вызывать поражение печени. Так, в США у 2-5 % больных, госпитализированных по поводу желтухи, впоследствии выявляется лекарственное поражение печени; от 15 до 30 % случаев фульминантной печеночной недостаточности и около 40 % случаев острого гепатита у лиц старше 50 лет связано с приемом лекарств [2, 3]. Частота лекарственных поражений печени неодинакова в разных странах и зависит от структуры потребления лекарств. В России острые медикаментозные поражения печени выявляются у 2,7 % госпитализированных больных и чаще всего связаны с приёмом противотуберкулезных, антибактериальных, анальгетических, гормональных, цитостатических, гипотензивных и антиаритмических средств [4]. В Англии первое место в этиологии фульминантной печеночной недостаточности занимает парацетамол, оттесняя на второй план острые вирусные гепатиты [5]. В США ежегодно острые отравления парацетамолом, требующие госпитализации, регистрируются с частотой 29 на 100000 населения, в Израиле — 57, в Великобритании — 200 [6, 7].

К сожалению, большинство токсических поражений печени протекает скрыто, клинически их трудно отличить от других заболеваний печени. Если лекарственное поражение печени вовремя не диагностировано и прием медикаментов продолжается, тяжесть поражения многократно возрастает [2, 8]. Смертность при токсических гепатопатиях достигает 5 % [9], а при отравлениях парацетамолом даже в невысоких дозах (4-12 г) — 19 % [6].

Печень является главным органом метаболизма ксенобиотиков. Окислительный метаболизм веществ катализируется цитохром Р450-зависимой монооксигеназной системой и другими ферментами [10]. Цитохром Р450 представлен набором белков (более 100 семейств), близких по строению, но разных по субстратной специфичности [11]. Благодаря реакциям окисления многие ксенобиотики, первично нетоксичные для печени, способны превращаться в токсические метаболиты [10-12]. В реакциях второй фазы образованные метаболиты конъюгируются с эндогенными молекулами, что приводит к уменьшению токсичности, повышению водорастворимости и облегчает выведение ксенобиотиков почками [12].

Общая характеристика токсических повреждений печени

Существует два основных типа повреждения печени ксенобиотиками [2, 8, 13]. "Предсказуемая" токсичность характеризуется зависимым от дозы образованием токсических метаболитов и дозозависимым повреждением гепатоцитов. Токсичность возникает при приеме вещества в дозе, превышающей емкость систем биотрансформации (передозировка, дефицит субстратов конъюгации и коферментов, ферментов, необходимых для детоксикации), а также под влиянием индукторов и ингибиторов ферментов. Дозозависимые поражения вызывают тетрахлорметан, парацетамол, тетрациклины, гризеофульвин, ниацин, амиодарон, эстрогены, анаболические гормоны, меркаптопурин, цитостатики и другие вещества.

Токсический эффект большинства лекарств непредсказуем. Поражение печени возникает лишь у чувствительных лиц и независимо от дозы [2, 14, 15]. Типичной причиной "непредсказуемой" токсичности является образование гаптенов (неоантигенов), вызывающих иммунное поражение печени. Этот тип реакций сопрождается системными проявлениями гиперчувствительности: высыпаниями, лихорадкой, эозинофилией и отличается быстрой регрессией симптомов при отмене препарата. Молекулярной основой идиосинкразической гепатотоксичности могут быть различия в активности метаболизирующих ферментов, дефекты иммунной системы и т. д. [2, 12, 15, 16]. Так, у лиц с генетически низким уровнем цитохрома Р4502D6, субстраты этого фермента — дебризохин, пергекселин, пропранолол, хинидин, дезипрамин имеют очень длительный период полувыведения и, следовательно, высокую вероятность токсичности [13, 15]. Дефицит ферментов конъюгации, в частности, изоферментов М1 и Т1 глутатион-S-трансферазы, повышает гепатотоксичность такрина у больных с болезнью Альцгеймера [17], а принадлежность к медленным ацетиляторам является фактором риска гепатотоксичности изониазида [2, 16].

Повреждения печени весьма многообразны и могут быть острыми и хроническими. Характеристика токсических повреждений печени, составленная на основе ранее опубликованных работ [2, 8, 18-20], приведена в таблице.

Нарушение функции печени

Многие ксенобиотики (барбитураты, антиконвульсанты, анальгетики, психотропные средства, антибиотики, противогрибковые, гиполипидемические и антигистаминные препараты, стероиды, антиоксиданты, витамины) способны усиливать синтез молекул метаболизирующих ферментов [21]. Хотя индукция имеет приспособительное значение и направлена на быстрейшее удаление ксенобиотика из организма, длительное повышение активности ферментов нарушает обмен стероидных гормонов, фолата, ретинола и холекальциферола. Стимуляция ксенобиотиками синтеза гема может провоцировать гипербилирубинемию [20] и порфирию [22].

Некроз и апоптоз гепатоцитов

Известны два механизма гибели клеток — некроз и апоптоз [23, 24]. Основными этапами некроза является повреждение плазматической мембраны, набухание митохондрий и всей клетки, потеря внутриклеточных компонентов, дезинтеграция ядра с последующим фагоцитозом погибших гепатоцитов. Некротическая смерть клетки сопровождается развитием активного воспалительного процесса и повреждениями окружающих тканей. Непосредственной причиной некроза является окислительный стресс и пероксидация липидов, образование аддуктов ксенобиотиков с биологически важными макромолекулами; повреждение митохондрий и нарушение продукции энергии, разрушение цитоскелета, массивный выход кальция и другие факторы.

Апоптоз — генетически запрограммированный процесс, при котором клетка сама активно способствует своей гибели [23, 24]. Апоптоз запускается через специальные "рецепторы смерти" на поверхности клетки или нерецепторным путем, что ведет к активации регуляторных белков, которые останавливают митотическую активность клетки (белок р53), вызывают фрагментацию ДНК (эндонуклеазы), деградацию жизненноважных белков (каскад протеолитических ферментов, каспаз), нарушают связь клетки с внеклеточным матриксом и т. д. Ранним проявлением апоптоза является падение электрохимического потенциала митохондриальной мембраны и повышение продукции активных форм кислорода. Морфологически апоптоз характеризуется образованием мембранных пузырей, агрегацией хроматина вблизи ядерной мембраны, конденсацией и фрагментацией клетки с образованием апоптотических телец с последующим их фагоцитозом. В отличие от некроза, при апоптозе не возникает выраженной воспалительной реакции.

Традиционно считается, что некроз инициируется нефизиологическими агентами, а апоптоз преимущественно физиологическими. Однако, последние исследования показали, что различия между некрозом и апоптозом на стадии их инициации не столь очевидны, и одни и те же факторы (например, активные формы кислорода, оксид азота) могут стимулировать оба процесса [24, 25]. Гепатотоксины вызывают гибель клеток как по механизмам некроза, так и апоптоза, что показано на примере парацетамола, тетрахлорметана и других ксенобиотиков, а соотношение между этими процессами определяется дозой, применением протекторов и другими факторами [26, 27].

Каким образом ксенобиотики запускают механизм апоптоза, предстоит еще выяснить. Возможно, что решающее значение принадлежит рецептор-независимому механизму, который инициируется неспецифическими факторами — оксидом азота, активными формами кислорода, то есть молекулами, способными повреждать клеточные структуры и без апоптоза [28]. Важная роль оксида азота в гибели клеток подтверждается не только увеличением его образования после введения токсинов [29], но и протекторной активностью ингибитора синтазы оксида азота аминогуанидина при повреждении печени тетрахлорметаном [30] и парацетамолом [29]. Оксид азота после превращения под влиянием супероксидного радикала в пероксинитрит вызывает нитрозилирование белков и инициирует апоптоз [31, 32]. Запускают механизм апоптоза и активные формы кислорода [33]. Один из возможных вариантов инциирования апоптоза клеток HepG2 при окислительном стрессе, индуцированном этанолом и хелатированным железом [34], представлен на рис. 1.

Активные формы кислорода могут появляться как продукт каталитического цикла цитохрома Р450, синтазы оксида азота, NADPH-редуктазы, диафоразы и других ферментов, либо вследствие участия семихинонных метаболитов ксенобиотиков в реакциях одноэлектронного переноса с кислородом [35-38], либо вследствие активации макрофагов ксенобиотиками, что показано для парацетамола [39, 40].

Еще один механизм токсического действия ксенобиотиков связан с образованием реакционноспособных метаболитов. Многие ферменты способны превращать ксенобиотики в ацетилирующие, алкилирующие или арилирующие метаболиты [8, 12, 41]. Так, цитохром P450-зависимое окисление бромбензола и парацетамола ведет к появлению электрофильных интермедиатов, образующих ковалентные аддукты с тиолами мембранных белков, которые регулируют гомеостаз кальция. Неконтролируемое возрастание уровня внутриклеточного кальция ведет к гибели клетки.

В зависимости от дозы ксенобиотика, некроз гепатоцитов может проявляться от бессимптомного повышения активности сывороточных трансаминаз до печеночной недостаточности. Известным примером является дозозависимый некроз печени, вызываемый парацетамолом [8, 12, 42, 43]. Метаболизм препарата включает его окисление цитохромами Р4502Е1, 1А2 и 3А, глюкуронирование или сульфатацию и коньюгацию с глутатионом электрофильного интермедиата — N-ацетил-p-бензохинонимина. В норме активность глюкуронил- и сульфотрансфераз достаточно высока и только небольшая часть парацетамола метаболизируется цитохромами P450. Если количество препарата превышает емкость этих ферментов, активный метаболит N-ацетил-p-бензохинонимин ковалентно связывается с макромолекулами клетки, нарушая функции митохондрий и ядра. Коньюгация с глутатионом способствует превращению метаболита в меркаптуровую кислоту — нетоксичный метаболит, экскретируемый почками. При передозировке парацетамола или повышенной чувствительности у отдельных лиц (обусловленной индукцией цитохрома P-450, истощением восстановленного глутатиона, ослаблением глюкуронирования и сульфатации), системы детоксикации исчерпываются и N-ацетил-p-бензохинонимин оказывает повреждающее действие. Еще один путь реализации токсичности парацетамола состоит в активации образования активных форм кислорода и оксида азота [29, 35, 39]. На рис. 2 показаны основные пути метаболической активации и детоксикации парацетамола, механизм его токсического действия.

Не только цитохром Р450, но и другие ферменты способны генерировать токсические метаболиты. Так, алкогольдегидрогеназа превращает аллиловый спирт в ненасыщенный альдегид акролеин, который через инициацию окислительного стресса и прямое повреждающее действие вызывает тяжелые некрозы печени [44]. Токсические метаболиты образуются и в реакциях конъюгации [12]. Так, ацилглюкуронид дифлунизала после ряда превращений ковалентно связывается с белками печени, нарушая их функцию и выступая в роли неоантигена [45], что показано на рис. 3.

Примером комбинированной токсико-аллергической реакции является гепатотоксичность галотана. Восстановительное дегалогенирование галотана происходит в анаэробных условиях с участием цитохромов Р4502В1, 2Е1 и 3А2 и ведет к образованию 2-хлор-1,1-дифторэтилена и 2-хлор-1,1,1-трифторэтана [46]. Образующиеся свободно-радикальные (неспаренный электрон) или карбеновые (2 неспаренных электрона) интермедиаты оказывают прямое или опосредованное (через окислительный стресс) цитотоксическое действие. Этим, очевидно, обьясняется факт повышения уровня трансаминаз у 1/3-1/5 пациентов сразу же после галотановой анестезии. При окислительном метаболизме галотана, катализируемом цитохромом Р4502Е1, появляется трифторацетилхлорид, который образует аддукты с микросомальными белками, включая цитохромы [47]. У части больных развивается тяжелый гепатит, связаный с образованием неоантигенов, которыми являются трифторацетилированные белки. Эти неоантигены образуются практически у всех экспонированных к галотану лиц, но лишь у незначительной части развивается тяжелое иммунное поражение печени. Факторами риска галотановой гепатотоксичности являются повторные анестезии, женский пол, ожирение (повышение активности Р4502Е1), индукция ферментов, генетическая предрасположенность [15].

Существенное значение для реализации токсического действия ксенобиотиков имеет состояние ферментных систем, участвующих в их метаболической активации и детоксикации. Генетически детерминированный или измененный вследствие индукции или ингибирования набор изоферментов цитохрома Р450, ферментов конъюгации может объяснить различную индивидуальную чувствительность к действию гепатотоксинов под влиянием фармакотерапии, факторов окружающей среды, питания. Показано, что гепатоциты крыс с высокой активностью цитохрома Р4502Е1 более чувствительны к четыреххлористому углероду и парацетамолу, чем клетки с низкой активностью [48-50]. Индукторы этого фермента (этанол, ацетон, голодание) усиливают, а ингибиторы (диэтилдитиокарбамат и диметилсульфоксид) ослабляют токсичность этих веществ.

Повреждения печени имеют определенные топографические особенности, что отображает структурную и функциональную неоднородность этого органа. В первой зоне ацинуса гепатоциты прилежат к портальному тракту и получают больше кислорода и питательных веществ, по сравнению с гепатоцитами второй и, особенно, третьей зоны [11]. Перипортальные гепатоциты (зона 1) содержат больше митохондрий и в них более интенсивно протекают энергетические процессы, бета-окисление жирных кислот, обмен аминокислот и синтез мочевины, глюконеогенез. В перивенозных гепатоцитах (зона 3) в большей мере представлены процессы окислительного метаболизма ксенобиотиков при относительном дефиците антиоксидантных и конъюгирующих ферментов. Вследствие этого в гепатоцитах 3 зоны образуется большее количество реакционноспособных метаболитов и они хуже обезвреживаются. Поэтому повреждение печени ксенобиотиками, как впрочем и воспалительное, ишемическое, вирусное повреждение, чаще имеет центролобулярную локализацию, затрагивая гепатоциты перивенозной зоны [3, 12, 51].

Преимущественно центролобулярные поражения вызывают большинство классических гепатотоксинов: четыреххлористый углерод, хлороформ, галотан [2, 52], диметилнитрозамин, бромбензол, парацетамол [52], N-метилформамид, кумарин и многие другие. Кокаин при легких отравлениях вызывает перипортальные некрозы, а при фульминантных гепатитах некрозы распространяются на среднюю и перивенозную зоны [53]. К токсинам, вызывающим преимущественно перипортальные некрозы, относят аллиловый спирт, витамин А, а среднезональные некрозы — конканавалин А [54-56].

Токсический гепатит

Токсический гепатит развивается в результате идиосинкразической реакции на введение ксенобиотиков и сопровождается проявлениями гиперчувствительности. Его гистологической основой является диффузный некроз гепатоцитов с моноцитарными и эозинофильными инфильтратами и сохраненной дольковой структурой печени [2, 8, 57]. Изониазид считается классическим примером препарата, вызывающего идиосинкразический гепатит. У 15-20 % получающих изониазид пациентов отмечается повышение активности сывороточных трансаминаз, но лишь у 1 % развивается тяжелый гепатит. Факторами риска являются голодание, прием индукторов цитохрома Р450 (алкоголя, рифампицина, прогестерона и др. ), возрастные изменения печеночного метаболизма и индивидуальная предрасположенность. Токсический гепатит вызывает также ранитидин [58], ципротеронацетат, метформин, фенитоин [2, 3, 12, 59, 60]. У 2% больных принимающих гипогликемический препарат троглитазон, развивается токсический гепатит [61].

Применение нестероидных противовоспалительных препаратов нередко сопровождается токсическим гепатитом и холестазом у чувствительных лиц. Механизм их токсичности состоит, очевидно, в образовании ковалентных аддуктов ацилглюкуронидов с белками, которые действуют как иммуногены и запускают Т-клеточную или антительную цитотоксичность [62]. Имеются данные о тяжелых токсических гепатитах с летальными исходами, вызванных сульфосалазином, диклофенаком, другими антифлогистиками [2, 63, 64]. Иногда идиосинкразическая реакция на лекарство может завершиться развитием тяжелого аутоиммунного гепатита, как это описано в отношении миноциклина [65].

Стеатоз

Стеатоз развивается вследствие аномальной аккумуляции триглицеридов внутри гепатоцитов [18, 19, 66, 67]. Макровезикулярный стеатоз (развивается при хроническом употреблении этанола) характеризуется единичными большими вакуолями триглицеридов, которые смещают ядро гепатоцита к периферии. Механизм его развития включает стимуляцию синтеза жирных кислот и триглицеридов, замедление удаления триглицеридов из гепатоцитов.

Микровезикулярный стеатоз (менее частый, но более опасный вариант гепатотоксической реакции), возникает в результате нарушения митохондриального b-окисления жирных кислот и характеризуется наличием мелких вкраплений триглицеридов внутри гепатоцитов, не смещающих ядро [19, 66]. Прерывание b-окисления приводит к этерификации жирных кислот до триглицеридов и их накоплению, лишает клетки енергии и нарушает их функцию. Микровезикулярный стеатоз вызывают аспирин, тетрациклины, изониазид, тиклопидин, гидразин, аминептин, тианептин, амиодарон, пергексилин, желчные кислоты, оротовая кислота, препараты ниацина, синтетические эстрогены, тиклопидин [66, 68, 69], противовирусные препараты — зидовудин, ламивудин [70].

Вальпроевая кислота вызывает поражение печени у 11-20 % пациентов, которое сопровождается безсимптомным повышением активности сывороточных трансаминаз и морфологически проявляется микровезикулярным стеатозом. Вальпроевая кислота конкурирует в митохондриях за ферменты b-окисления и истощает запасы КоА, что приводит нередко к фатальному поражению печени [2, 3, 19, 66]. Реакционноспособный ее метаболит — 2-пропил-4-пентеноевая кислота также вносит определенный вклад в гепатоксичность [71].

Терапия амиодароном у 15-55 % больных осложняется поражением печени — от незначительного снижения ее функции до выраженных нарушений (желтуха, гепатомегалия, микро- и макровезикулярный стеатоз, цирроз) с летальным исходом [2, 8, 72]. Реже развивается фосфолипидоз, который проявляется накоплением комплексов фосфолипид-лекарство в лизосомах гепатоцитов. Кетоконазол также индуцирует накопление фосфолипидов в печени [73].

Холестаз

Холестаз является результатом нарушения продукции желчи и ее выведения. Лекарственный холестаз включает нарушение гепатоцеллюлярной секреции желчи (холестаз без гепатита либо холестатический гепатит), обструкцию дуктул (холангиолит) или междольковых протоков (холангит), или внепеченочную обструкцию [74]. Чистый холестаз без гепатита индуцируется, как правило, стероидами, а в остальных случаях холестаз чаще сопровождается воспалительной или аутоиммуной реакцией [74].

В основе холестаза лежит повреждение ксенобиотиками каналикулярных мембран и цитоскелета, ингибирование АТФ-зависимых транспортных механизмов, снижение функции белков-транспортеров органических анионов и желчных кислот, Р-гликопротеина, белка множественной резистентности, нарушение гомеостаза кальция и глутатиона [74-76]. Так, циклоспорин, рифампицин, глибенкламид, эстрогены тормозят транспорт желчных кислот транспортером Bsep, зависимый от АТФ [75, 77, 78]. Холестазу сопутствует выход в желчь и кровь компонентов каналикулярных мембран, что используется для диагностики холестаза (определение активности гама-глутамилтрансферазы и щелочной фосфатазы в сыворотке крови).

Типичными индукторами холестаза без гепатита являются пероральные контрацептивы и анаболические стероиды [75, 79, 80]. Повреждение обычно полностью восстанавливается через 2 мес после отмены препарата.

Гепатоканаликулярный холестаз (паренхиматозно-канальцевый холестаз), развивающийся в результате реакции гиперчувствительности, характеризуется выраженным портальным воспалением и вторичным повреждением канальцев. Такое поражение возникает, например, у 1-2 % больных, получавших аминазин. Аминазин и его метаболиты способны повреждать каналикулярные мембрана и блокировать в них активность Na+/K+-ATФ-азы [4, 5, 74]. Применение каптоприла, эналаприла и других ингибиторов ангиотензин-превращающего фермента осложняется холестатическим гепатитом, возможным механизмом которого, кроме идиопатической гиперчувствительности, являются изменения метаболизма эйкозаноидов [81]. Холестаз с гепатитом нередко является осложнением терапии амиодароном [82], пропафеноном [83], диклофенаком [84], противоопухолевыми препаратами [4], симвастатином [86], ранитидином [58]. Описаны случаи выраженного холестаза после приема тиабендазола, часть из которых завершилась развитием микронодулярного цирроза [85]. Клавулановая кислота, входящая в состав амоксиклава, эритромицин и другие макролиды, пенициллины также вызывают гепатоканаликулярный холестаз [2, 8, 74, 87].

Причиной холестаза может быть склерозирующий холангит — прогрессирующий фиброз внутри- или внепеченочных желчных протоков вследствие токсического повреждения ветвей печеночной артерии, кровоснабжающих желчные протоки. Это поражение обычно вызникает при внутриартериальном введении цитостатиков 5-фтордезоксиуридина [88] и 5-фторурацила [89].

Лекарственное поражение сосудов печени

Веноокклюзивная болезнь характеризуется тромбозами эфферентных печеночных венул, что приводит к центролобулярным некрозам, нарушению оттока крови, развитию цирроза и печеночной недостаточности [90-92]. Предполагается, что в ее основе лежит избирательное поражение лекарствами синусоидальных эндотелиальных клеток, воспалительная реакция и активация свертывания крови.

Циклофосфамид, азатиоприн, бусульфан, мелфалан, тиотеф, этопозид, циклофосфамид и общее облучение способны индуцировать развитие вено-окклюзивной болезни [90, 91, 93]. Веноокклюзивные поражения стали серьезной проблемой при использовании иммуносупрессивной терапии при пересадке костного мозга и встречаются с частотой 27-28 %. У части пациентов они явились причиной смерти или потребовали наложения портосистемных шунтов и даже пересадки печени. Веноокклюзивную болезнь вызывают некоторые пирролизидиновые алкалоиды растений, используемые в народной медицине и питании, в частности монокроталин, сенецефиллин, алкалоиды гелиотропа, что в ряде стран Востока является нередкой причиной тяжелых поражений печени, включая синдром Бадда-Киари [2, 8].

Пероральные контрацептивы, тамоксифен, андрогены, даназол, иногда азатиоприн могут вызывать так называемый пелиозный гепатит, при котором образуются крупные, заполненные кровью полости в паренхиме печени, выстланные синусоидальными клетками [8, 79, 90, 91]. Контрацептивы могут также привести к синдрому Бадда-Киари из-за их тромбогенных свойств [18].

Фиброз

Фиброз развивается при большинстве поражений печени, но только при некоторых из них он является преобладающим признаком. Фиброзная ткань, откладываясь в пространстве Диссе, нарушает кровоток в синусоидах и приводит к развитию портальной гипертензии [18, 20, 94]. По некоторым данным, фиброз развивается у 23% пациентов ревматоидным артритом, лечившихся метотрексатом [95]. Подобные поражения печени вызывают и другие цитостатики — циклофосфосфамид, азатиоприн, а также метилдофа, изониазид, витамин А, героин [8, 20, 94].

Опухоли печени

Длительное употребление оральных контрацептивов и даназола ассоциируется с развитием аденомы печени у женщин детородного возраста [8, 20, 96, 97]. Как правило, эта опухоль уменьшается или исчезает после отмены препарата. При длительном приеме анаболиков и половых гормонов может развиться гепатоцеллюлярная карцинома [79]. Экспериментально показана возможность индукции эстрогенами опухолей печени у хомячков [98].

Таким образом, химически-индуцированная патология печени представляет важную проблему современной медицины. Лекарства, средовые и промышленные токсиканты вызывают разнообразные по клиническим проявлениям и механизмам развития патологические изменения в печени. Часто эта патология протекает скрыто и плохо распознается клиницистами. Существующие подходы к лечению и профилактике химической патологии печени мало эффективны, что в значительной мере связано с недостаточным уровнем информированности медицинских работников о побочном действии лекарственных средств, неблагоприятном влиянии ксенобиотиков на организм.

Литература
1. Holland E. G., Degruy F. V. Drug-induced disorders// Am. Fam. Physician. —1997. —V. 56,№ 7. -Р. 1781-1792.
2. Lewis J. H. Drug-induced liver disease// Cur. Pract. Med. -1999. -№ 2. -P. 49-58.
3. Bass N. M., Ockner B. A. Drug-induced liver disease. Boyer T. D. eds. Hepatology: a textbook of liver disease 3rd ed. -Philadelphia: 1996. -Р. 962-1017.
4. Полунина Т. Е. Лекарственные гепатиты. //Терапев. архив. —1999. -T.  71, № 12, С. 46-49.
5. Plevris J. N., Schina M., Hayes P. C. Review article: the management of acute liver failure// Aliment. Pharmacol. Ther. -1998. -V.  12, № 5. -Р. 405-418.
6. Acetaminophen Toxicity in an Urban County Hospital/ Schiodt F. V., Rochling F. A, Casey D. L., Lee W. M. / New England Journal of Medicine. -1997. —V.  337, № 16. - Р. 1112-1117.
7. Bond G. R., Hite L. K. Рopulation-based Incidence and Outcome of Acetaminophen Poisoning by Type of Ingestion //Academic Emergency Medicine. -1999. -V.  6, № 11. -Р. 1115-1120.
8. Sturgill M. G., Lambert G. H. Xenobiotic-induced hepatotoxicity: mechanisms of liver injury and methods of monitoring hepatic function// Clin. Chem. -1997. -V.  43,№ 8, Pt 2. -Р. 1512-1526.
9. Drug-induced liver disease: experiences of the Swiss Center for Adverse Drug Effects 1989-91/ Werth B, Kuhn M, Hartmann K, Kobler E, Reinhart WH. /J Suisse Med. -1993. -V.  123, № 1. -Р. 203-206.
10. Арчаков А. И., Карузина И. И. Окисление чужеродных соединений и проблемы токсикологии // Вестн. АМН СССР. -1988. -№ 1. -С. 14-24.
11. Oinonen T., Lindros K. O. . Zonation of hepatic cytochrome P-450 expretion and regulation //Biochem. J. -1998. -V. 329, № 1. -Р. 17-35.
12. Hinson J.A., Forkert P.G. Phase II enzymes and bioactivation// Can. J Physiol. Pharmacol. -1995. -V. 73, № 10.-Р. 1407-1413.
13. Lee W.M. Drug-induced hepatotoxicity // New England Journ. Med. -1995. -V. 333, № 17. -Р. 1118-1127.
14. Арзамасцев Е. В., Любимов Б. И. Современные требования к доклиническому изучению безопасности новых лекарственных препаратов // Эксперим. клин. фармакол. -1995. -N 3. -С. 7-12.
15. Larrey D., Pageaux G. P. Genetic predisposition to drug-induced hepatotoxicity. // J. Hepatol. -1997. -V. 26, Suppl 2. -Р. 12-21.
16. Wormhoudt L. W., Commandeur J. N., Vermeulen N. P. Genetic polymorphisms of human N-acetyltransferase, cytochrome P450, glutathione-S-transferase, and epoxide hydrolase enzymes: relevance to xenobiotic metabolism and toxicity//Crit. Rev. Toxicol. - 1999. -V. 29, № 1. -Р. 59-124.
17. Combined glutathione-S-transferase M1 and T1 genetic polymorphism and tacrine hepatotoxicity/ Simon T, Becquemont L, Mary-Krause M, de Waziers I, Beaune P, Funck-Brentano C. /Clin. Pharmacol. Ther. - 2000. -V. 67, № 4. -Р. 432-437.
18. Zimmerman H. J., Maddrey W. C. Toxic and drug-induced hepatitis. Schiff L Schiff ER eds. Diseases of the liver 7th ed. -1993. -Р. 707-783.
19. Lammert F., Matern S. Hepatic diseases caused by drugs. Schweiz. Rundsch. Med. Prax. -1997. -V. 86, № 29-30. -Р. 1167-1171.
20. Farrell G. C. The clinicopathological spectrum of drug-induced liver diseases. Drug-induced liver disese. : Churchill Livingstone, London: 1994. -101 р.
21. Inhibition and induction of human cytochrome P450 (CYP) enzymes/ Pelkonen O., Maenpaa J., Taavitsainen P., Rautio A., Raunio H. /Xenobiotica. -1998. -V. 28, № 12. -Р. 1203-1253.
22. Bloomer J. R. Liver metabolism of porphyrins and haem// J Gastroenterol. Hepatol. -1998. -V. 13, № 3. -Р. 324-329.
23. Фильченков А. А., Стойка Р. С. Апоптоз и рак. Киев:Морион, 1999. -184 с.
24. Kaplowitz N. Mechanisms of liver cell injury//J Hepatol. -2000. -V. 32, № 1. -Р. 39-47.
25. A comparison of apoptosis and necrosis induced by hepatotoxins in HepG2 cells/ O'Brien T., Babcock G., Cornelius J., Dingeldein M., Talaska G., Warshawsky D., Mitchell K. /Toxicol. Appl. Pharmacol. -2000. -V. 164, № 3. -Р. 280-290.
26. Ray S. D., Jena N. A hepatotoxic dose of acetaminophen modulates expression of BCL-2, BCL-X(L), and BCL-X(S) during apoptotic and necrotic death of mouse liver cells in vivo// Arch. Toxicol. -2000. -V. 73, № 10-11. -Р. 594-606.
27. Acute hepatotoxicant exposure induces TNFR-mediated hepatic injury and cytokine/apoptotic gene expretion/ Horn T. L., O'Brien T. D., Schook L. B., Rutherford M. S. / Toxicol. Sci. -2000. -V. 54, № 1. -Р. 262-273.
28. Cellular oxygen toxicity. Oxidant injury without apoptosis/ Kazzaz J. A., Xu J., Palaia T. A., Mantell L., Fein A. M., Horowitz S. / J Biol. Chem. -1996. -V. 271, № 25. -Р. 15182-15186.
29. Role of nitric oxide in acetaminophen-induced hepatotoxicity in the rat/ Gardner C. R., Heck D. E., Yang C. S., Thomas P. E., Zhang X. J., DeGeorge G. L., Laskin J. D., Laskin D. L. /Hepatology. -1998. -V. 27, № 3. -Р. 748-754.
30. Protective effect of aminoguanidine, a nitric oxide synthase inhibitor, against carbon tetrachloride induced hepatotoxicity in mice/Al-Shabanah O. A., Alam K., Nagi M. N., Al-Rikabi A. C., Al-Bekairi A. M. / Life Sci. -2000. -V. 66, № 3. -Р. 265-270.
31. Murphy MP Nitric oxide and cell death// Biochim. Biophys. Acta. -1999. -V. 1411, № 2-3. -Р. 401-414.
32. An apoptotic model for nitrosative stress/ Eu J. P., Liu L., Zeng M., Stamler J. S. / Biochemistry. -2000. -V. 39, № 5. -Р. 1040-1047.
33. Free radicals and reactive oxygen species in programmed cell death/ Anderson K. M., Seed T., Ou D., Harris J. E. / Med. Hypotheses. -1999. -V. 52, № 5. -P. 451-463.
34. Sakurai K., Cederbaum A. I. Oxidative stress and cytotoxicity induced by ferric-nitrilotriacetate in HepG2 cells that express cytochrome P450 2E1//Mol. Pharmacol. -1998. -V. 54, № 6. -Р. 1024-1035.
35. Peroxidation-Dependent and Peroxidation-Independent Mechanisms by which Acetaminophen Kills Cultured Rat Hepatocytes/ Farber J., Leonard T., Kyle M., Nakae D., Serroni A. /Arch. Biochem. Biophys. -1998. -V. 267. -Р. 640-650.
36. Multiple activated oxygen species in P450 catalysis: contributions to specificity in drug metabolism/ Coon M. J., Vaz A. D., McGinnity D. F., Peng H. M. / Drug Metab. Dispos. -1998. -V. 26, № 12. -Р. 1190-1193.
37. Nitric oxide synthases catalyze the activation of redox cycling and bioreductive anticancer agents/ Garner A. P., Paine M. J., Rodriguez-Crespo I., Chinje E. C., Ortiz De Montellano P., Stratford I. J., Tew D. G., Wolf C. R. / Cancer Res. -1999. -V. 59, № 8. -Р. 1929-1234.
38. Beall H. D., Winski S. I. Mechanisms of action of quinone-containing alkylating agents inqo1-directed drug development//Front. Biosci. -2000. -V. 1, № 5. -Р. 639-648.
39. Pretreatment of Mice With Macrophage Inactivators Decreases Acetaminophen Hepatotoxicity and the Formation of Reactive Oxygen and Nitrogen Species/ Michael1 S. L., Pumford N. R., Mayeux P. R., Niesman M. R., Hinson J. A. / Hepatology. -1999. -V. 30, № 1. -Р. 186-195.
40. The hepatic inflammatory response after acetaminophen overdose: role of neutrophils/Lawson J. A., Farhood A., Hopper R. D., Bajt M. L., Jaeschke H. / Toxicol. Sci. -2000. -V. 54, № 2. -Р. 509-516.
41. Pumford N. R., Halmes N. C. Protein targets of xenobiotic reactive intermediates//Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. -1997. -V. 37. -Р. 91-117.
42. Nelson S. D. Mechanisms of the formation and disposition of reactive metabolites that can cause acute liver injury// Drug Metab. Rev. -1995. -V. 27, № 1-2. -Р. 147-177.
43. Cohen S. D., Khairallah E. A. Selective protein arylation and acetaminophen-induced hepatotoxicity// Drug Metab. Rev. -1997. -V. 29, № 1-2. -Р. 59-77.
44. Rikans L. E., Cai Y., Hornbrook K. R. Allyl alcohol cytotoxicity in isolated rat hepatocytes: mechanism of cell death does not involve an early rise in cytosolic free calcium// Arch. Toxicol. -1994. -V. 69, № 1. -Р. 24-29.
45. Wang M., Dickinson R. G. Disposition and covalent binding of diflunisal and diflunisal acyl glucuronide in the isolated perfused rat liver// Drug Metab. Dispos. -1998. -V. 26, № 2. -Р. 98-104.
46. Reductive metabolism of halothane by cytochrome P450 isoforms in rats and humans/ Chow T., Imaoka S., Hiroi T., Funae Y. /Res. Commun. Mol. Pathol. Pharmacol. -1996. -V. 93, № 3. -Р. 363-374.
47. Interindividual variability in P450-dependent generation of neoantigens in halothane hepatitis/ Eliasson E., Gardner I., Hume-Smith H., de Waziers I., Beaune P., Kenna J. G. / Chem. Biol. Interact. -1998. -V. 116, № 1-2. -Р. 123-141.
48. Гепатотоксична дія парацетамолу у щурів з різною вихідною активністю ферментів, що метаболізують ксенобіотики / Блажієвська Г. Й., Андрєєв О. П., Качула С. А. Пентюк Н. О., Столярчук Е. В., Паламарчук O. B., Пентюк О. О. / Вісник Вінницького держ. мед. університету. -1997. -Т. 1, № 1. -С. 16-18.
49. Метаболические предикторы гепатотоксического действия тетрахлорметана у крыс/Блажиевская Г. И., Яковлева О. А., Медвидь З. С., Андреев А. П., Пентюк А. А., Качула С. А., Пентюк Н. А. /Токсикол. вестн. -1998. -№ 1. -С. 21-25.
50. Вплив гіперкетонемії та фенобарбіталу на вміст відновленого глутатіону в ізольованих гепатоцитах щурів при їх інкубації з тетрахлорметаном, парацетамолом та гідразином/ Григорьянц В. Г., Сокур С. О., Мороз Л. В., Качула С. О., Коваленко Є. М., Дмітрієва К. Ю., Блажієвська Г. Й., Істошин В. М., Пентюк О. О. /Матеріали конференції "Актуальні проблеми клінічної фармакології". Віннця, 1998. -C. 234-235.
51. Nakamura Y., Takahashi T. A computer-aided 3-D geometry of acute and chronic zonal necrosis: three-D tangent counting applied in an attempt to re-examine the structure of the human liver// Tohoku J Exp. Med. -1998. -V. 184, № 3, -Р. 207-227.
52. Lee V. M., Cameron R. G., Archer M. C. Zonal location of compensatory hepatocyte proliferation following chemically induced hepatotoxicity in rats and humans// Toxicol. Pathol. -1998. -V. 26, № 5. -Р. 621-627.
53. Powell C. J., Charles S. J., Mullervy J. Cocaine hepatotoxicity: a study on the pathogenesis of periportal necrosis// Int. J Exp. Pathol. -1995. -V. 76, № 1. -Р. 85-88.
54. Sell S. Electron microscopic identification of putative liver stem cells and intermediate hepatocytes following periportal necrosis induced in rats by allyl alcohol// Stem Cells. -1997. -V. 15, № 5. -Р. 378-385.
55. Hepatic histopathology of a vitamin A overdose in mouse liver/ Shintaku T., Murata T., Yamaguchi K., Makita T. /J Electron. Microsc. -1998. -V. 47, № 3. -Р. 263-267.
56. Midzonal necrosis of the liver after concanavalin A-injection / Satoh M., Kobayashi K., Ishii M., Igarashi T., Toyota T. /J. Exp. Med. -1996. -V. 180, № 2. -Р. 139-152.
57. Stuart R. L., Wilson J., Grayson M. L. Isoniazid toxicity in health care workers// Clin. Infect. Dis. -1999. -V. 28, № 4. -Р. 895-897.
58. Ramrakhiani S., Brunt E., Bacon B. R. Possible cholestatic injury from ranitidine with a review of the literature// Am. J Gastroenterol. -1998. -V. 93, № 5. -Р. 822-826.
59. Acute hepatic necrosis in a patient treated with cyproterone acetate / Lombardi A., Ferrazza P., Castaldi F., Covotta L., Tesoriere A., Urbano V., Midiri G. // G. Chir. -1998. -V. 19, № 4. -Р. 161-163.
60. Babich M. M., Pike I., Shiffman M. L. Metformin-induced acute hepatitis // Am. J. Med. -1998. -V. 104, № 5. -Р. 490-492.
61. Hepatotoxicity due to troglitazone: report of two cases and review of adverse events reported to the United States Food and Drug Administration/ Kohlroser J., Mathai J., Reichheld J., Banner B. F., Bonkovsky H. L. / Am. J. Gastroenterol. -2000. -V. 95, № 1. -Р. 272-276.
62. Boelsterli U. A., Zimmerman H. J., Kretz-Rommel A. Idiosyncratic liver toxicity of nonsteroidal antiinflammatory drugs: molecular mechanisms and pathology// Crit. Rev. Toxicol. -1995. -V. 25, № 3. -Р. 207-235.
63. Bjorkman D. Nonsteroidal anti-inflammatory drug-associated toxicity of the liver, lower gastrointestinal tract and esophagus//Am. J. Med. -1998. -V. 105, № 5. -Р. 17-21.
64. Fulminant hepatitis in two children treated with sulfasalazine for Crohn disease/ Besnard M., Debray D., Durand P., Fabre M., Chardot C., Cezard J. P. /Arch. Pediatr. -1999. -V. 6, № 6. -Р. 643-646.
65. Minocycline-related autoimmune hepatitis: case series and literature review/ Teitelbaum J. E., Perez-Atayde A. R., Cohen M., Bousvaros A., Jonas M. M. / Arch. Pediatr. Adolesc. Med. -1998. -V. 152, № 11. -Р. 1132-1136.
66. Hepatotoxicity due to mitochondrial dysfunction/ Pessayre D., Mansouri A., Haouzi D., Fromenty B. / Cell Biol. Toxicol. -1999. -V. 15, № 6. -Р. 367-373.
67. Hegedus G. Pathology of alcoholic liver disease//Orv. Hetil. -2000. -V. 13, № 141(7). -Р. 331-336.
68. Role of hydrazine in the mechanism of isoniazid hepatotoxicity in rabbits/ Sarich T. C., Youssefi M., Zhou T., Adams S. P., Wall R. A., Wright J. M. / Arch. Toxicol. -1996. -V. 70, № 12. -Р. 835-840.
69. A new drug responsible for microvesicular steatosis: ticlopidine/ Remy A. J., Heran B., Galindo G., Tapie C., Khemissa F., Larrey D. /Gastroenterol. Clin.- Biol.-1999. -V. 23, № 1. -Р. 151-152.
70. Hepatotoxicity associated with antiretroviral therapy in adults infected with human immunodeficiency virus and the role of hepatitis C or B virus infection/ Sulkowski M. S., Thomas D. L., Chaisson R. E., Moore R. D. / JAMA. -2000. -V. 283, № 1. -Р. 74-80.
71. Baillie T. A. Metabolism of valproate to hepatotoxic intermediates// Pharm. Weekbl. Sci. -1992. -V. 14, № 3A. -Р. 122-125.
72. Reversible fulminant hepatitis following intravenous amiodarone loading. Amiodarone hepatotoxicity/ Iliopoulou A., Giannakopoulos G., Mayrikakis M., Zafiris E., Stamatelopoulos S. /Int. J Clin. Pharmacol. Ther. -1999. -V. 37, № 6. -Р. 312-313.
73. Ketoconazole-induced hepatic phospholipidosis in the mouse and its association with de-N-acetyl ketoconazole/ Whitehouse L. W., Menzies A., Mueller R., Pontefract R. / Toxicology. -1994. -V. 94, № 1-3. -Р. 81-95.
74. Erlinger S Drug-induced cholestasis// J.Hepatol. -1997. -V. 26, Suppl 1. -Р. 1-4.
75. Drug- and estrogen-induced cholestasis through inhibition of the hepatocellular bile salt export pump (Bsep) of rat liver / Stieger B., Fattinger K., Madon J., Kullak-Ublick G. A., Meier P. J. / Gastroenterology. -2000. -V. 118, № 2. -Р. 422-430.
76. Role of glutathione and oxidative stress in phalloidin-induced cholestasis/ Bouchard G., Yousef I., Barriault C., Tuchweber B. /J.Hepatol. -2000. -V. 32, № 4. -Р. 550-560.
77. Inhibition by cyclosporin A of adenosine triphosphate-dependent transport from the hepatocyte into bile/ Kadmon M., Klunemann C., Bohme M., Ishikawa T., Gorgas K., Otto G., Herfarth C. /Gastroenterology. -1993. -V. 104, № 5. -Р. 1507-1514.
78. Mrp2 is essential for estradiol-17beta(beta-D-glucuronide)-induced cholestasis in rats/ Huang L., Smit J., Meijer D., Vore M. / Hepatology. -2000. -V. 32, № 1. -Р. 66-72.
79. Dourakis S. P., Tolis G. Sex hormonal preparations and the liver//Eur. J. Contracept. Reprod. Health. Care. -1998. -V. 3, № 1. -Р. 7-16.
80. Habscheid W., Abele U., Dahm H. H. Severe cholestasis with kidney failure from anabolic steroids in a body builder//Dtsch. Med. Wochenschr. -1999. -V. 124, № 36. -Р. 1029-1032.
81. Hagley M. T., Hulisz D. T., Burns C. M. Hepatotoxicity associated with angiotensin-converting enzyme inhibitors// Ann. Pharmacother. -1993. -V. 27, № 2. -Р. 228-231.
82. Chang C., Petrelli M., Tomashefski J., McCullough A. J. Severe intrahepatic cholestasis caused by amiodarone toxicity after withdrawal of the drug: a case report and review of the literature// Arch. Pathol. Lab. Med. -1999. -V. 123, № 3. -Р. 251-256.
83. Propafenone-induced liver injury: report of a case and review of the literature/ Mondardini A., Pasquino P., Bernardi P., Aluffi E., Tartaglino B., Mazzucco G., Bonino F., Verme G., Negro F. /Gastroenterology. -1993. -V. 104, № 5. -Р. 1524-1526.
84. Diclofenac-associated acute cholestatis hepatitis/ Hackstein H., Mohl W., Puschel W., Stallmach A., Zeitz M. / Z. Gastroenterol. -1998. -V. 36, № 5. -Р. 385-389.
85. Cholestatic hepatitis ascribed to the use of thiabendazole/ Eland I. A., Kerkhof S. C., Overbosch D., Wismans P. J., Stricker B. H. /Ned. Tijdschr. Geneeskd. -1998. -V. 142, № 23. -Р. 1331-1334.
86. Rhabdomyolysis and cholestatic hepatitis under treatment with simvastatin and chlorzoxazone/ Bielecki J. W., Schraner C., Briner V., Kuhn M. / Schweiz. Med. Wochenschr. -1999. -V. 129, № 13. -Р. 514-518.
87. Westphal J. F., Vetter D., Brogard J. M. Hepatic side-effects of antibiotics// J. Antimicrob. Chemother. -1994. -V. 33, № 3. -Р. 387-401.
88. Hepatobiliary toxicity of 5-fluoro-2'-deoxyuridine. Intra-arterial versus portal venous routes of infusion/ Andrews J. C., Kuntsen C., Terio P., Priescorn D., Ensminger W. D. / Invest. Radiol. -1991. -V. 26, № 5. -P. 461-464.
89. Sclerosing cholangitis-induced biliary cyst formation: complication of hepatic artery infusion chemotherapy/ Miyamoto S., Umekita N., Maeshiro T., Awane Y. /Gan To Kagaku Ryoho. -1995. -V. 22, № 11. -P. 1684-1686.
90. Zafrani E. S. Drug-induced vascular lesions of the liver//Anat. Pathol. -1997. -V. 2. -Р. 135-145.
91. Bearman S. I. Veno-occlusive disease of the liver// Curr. Opin. Oncol. -2000. -V. 12, № 2. -Р. 103-109.
92. Faioni E., Mannucci P. Veno-occlusive disease of the liver after bone marrow transplantation: the role of hemostasis//Leuk. Lymphoma. -1997. -V. 25, № 3-4. -Р. 233-245.
93. Veno-occlusive disease of the liver after busulfan, melphalan, and thiotepa conditioning therapy: incidence, risk factors, and outcome/ Lee J. L., Gooley T., Bensinger W., Schiffman K., McDonald G. B. / Biol. Blood. Marrow. Transplant. -1999. -V. 5, № 5. -Р. 306-315.
94. Cellular and matrix changes in drug abuser liver sinusoids: a semiquantitative and morphometric ultrastructural study/ Trigueiro de Araujo M. S., Gerard F., Chossegros P., Guerret S., Barlet P., Adeleine P., Grimaud J. A. / Virchows Arch. A Pathol. Anat. Histopathol. -1993. -V. 422, № 2. -P. 145-152.
95. Methotrexate hepatotoxicity in psoriatics: report of 104 patients from Nova Scotia, with analysis of risks from obesity, diabetes and alcohol consumption during long term follow-up/ Malatjalian D. A., Ross J. B., Williams C. N., Colwell S. J., Eastwood B. J. / Can. J. Gastroenterol. -1996. -V. 10, № 6. -Р. 369-375.
96. Danazol-induced hepatocellular adenoma/ Fermand J. P., Levy Y., Bouscary D., D'Agay M. F., Clot P., Frija J., Brouet J. C. /Am. J. Med. -1990. -V. 88, № 5. -Р. 529-530.
97. Transformation of hepatic adenoma into hepatocellular carcinoma in patients with prolonged use of oral contraceptives/ Herman P., Machado M. A., Volpe P., Pugliese V., Vianna M. R., Bacchella T., Machado M. C., Pinotti H. W. / Rev. Hosp. Clin. Fac. Med. Sao Paulo. -1994. -V. 49, № 1. -Р. 30-33.
98. Coe J. E., Ishak K. G., Ross M. J. Estrogen-induced hepatic toxicity and hepatic cancer: differences between two closely related hamster species// Liver. -1998. -V. 18, № 5. -Р. 343-351.


| Содержание |